RESPUESTA ANTE LA COVID-19 - Estamos comprometidos a apoyar a nuestra comunidad científica durante esta pandemia. Obtener más información

Amplificador de patch-clamp de registros de canales únicos a macroscópicos grandes

 

La serie de amplificadores de Axon Instruments® ofrecen las mejores soluciones para la variedad completa de experimentos de patch clamp. El catálogo de amplificadores incluye Axopatch™ 200B para registros de canal único de ruido ultrabajo, MultiClamp™ 700B para registros de fijación de voltaje de célula completa y de fijación de corriente de alta velocidad, y Axoclamp™ 900A para registros de fijación de dos electrodos y de fijación de corriente.

  • Cancelación del ruido Icono

    Minimice la relación señal-ruido

    El amplificador Axopatch 200B Capacitor Feedback Patch Clamp ofrece uno de los registros de canal único de ruido más bajo disponible gracias a la innovadora tecnología de retroalimentación de capacitor.

  • Adaptable Icono

    Realice experimentos multicanal

    El amplificador de electrodos MultiClamp 700B permite registros de fijación de voltaje de célula completa y de fijación de corriente. Es el amplificador más versátil del catálogo.

  • Medir Icono

    Mida corrientes grandes

    El amplio rango de cumplimiento de salida de nuestro amplificador de microelectrodos Axoclamp 900A facilita la medida de registros amplios y rápidos de fijación de voltaje y fijación de corriente.

Características

  • Control del entorno Icono

    Cabezal refrigerado activamente

    El amplificador Axopatch 200B cuenta con tecnología patentada que proporciona una refrigeración activa del cabezal (headstage) que reduce el ruido eléctrico cerca de los límites teóricos de la física.

  • Software Icono

    Control de ajustes mediante software

    Los amplificadores MultiClamp 700B y Axoclamp 900A ofrecen control mediante software. El control mediante software simplifica la configuración y permite la automatización de los parámetros, el telegrafiado y los protocolos avanzados.

  • Registro Icono

    Admite hasta cuatro cabezales

    MultiClamp 700B admite hasta dos cabezales CV-7B principales y dos cabezales auxiliares opcionales (tipo HS-2 o VG-2) que permiten el registro de múltiples canales para estudios de redes celulares.

  • Amplitud Icono

    Amplio rango de cumplimiento de salida

    El amplificador Axoclamp 900A admite la medición de corrientes grandes y garantiza una velocidad de fijación más rápida (±180 V en los modos TEVC y HVIC).

  • Adaptable Icono

    Múltiples modos de funcionamiento

    El amplificador Axoclamp 900A ofrece 5 modos de funcionamiento: fijación de corriente, fijación de corriente discontinua, fijación de voltaje de dos electrodos, fijación de voltaje de electrodo único discontinuo, fijación de corriente de alto voltaje.

  • Datos Icono

    Funciona con cualquier sistema de adquisición de datos

    La familia de amplificadores se integra con la mayoría de programas de adquisición de datos. El software pCLAMP™ 11 y el sistema DigiData® 1550B para la adquisición y análisis de datos proporcionan un rendimiento óptimo.

¿Qué amplificador es el adecuado para mí?

  Amplificador Axopatch 200B Amplificador MultiClamp 700B Amplificador Axoclamp 900A
Registro de canal único
   
 
 
Fijación de voltaje de célula completa
   
   
 
Fijación de corriente de célula completa
 
   
   
Estudio de bicapas
   
   
 
Registro de potencial de campo extracelular
 
   
   
Estudio de amperometría/voltametría
  
   
 
Estudio de nanoporos
   
 
 
Registro de electrodo afilado intracelular
 
   
   
Registro de fijación de voltaje de dos electrodos    
   

Recursos más recientes

21

Aplicaciones de los amplificadores de patch-clamp Axon Instruments

  • Amplificador de fijación de corriente

    Amplificador de fijación de corriente

    La fijación de corriente es un método utilizado para medir el potencial de membrana resultante (voltaje) a partir de una inyección de corriente. Para medir el potencial de membrana, tanto MultiClamp 700B como Axoclamp 900A monitorizan la caída de voltaje iniciada por la inyección de corriente a lo largo de un resistor en serie. La fijación de corriente se utiliza frecuentemente para inyectar ondas de corriente simuladas, pero realistas, dentro de la célula y monitorizar el efecto en la membrana. Esta técnica es ideal para la evaluación de procesos celulares importantes como los potenciales de acción.

    Electrofisiología

    Electrofisiología: Patch-clamp

    La electrofisiología es el campo de investigación que estudia los cambios de corriente y voltaje a través de la membrana celular. Las técnicas de electrofisiología se utilizan ampliamente en una gran variedad de aplicaciones de neurociencia y fisiología; desde el entendimiento del comportamiento de canales iónicos individuales en la membrana de una célula, hasta los cambios en la célula completa en el potencial de membrana de una célula y los cambios a mayor escala en el potencial de campo en los cortes de cerebro in vitro o en regiones del cerebro in vivo.

    Más información  

  • Canales iónicos

    Canales iónicos

    Un canal iónico es un grupo de proteínas que forman un poro que atraviesa la bicapa lipídica de una célula. Cada canal es permeable a un ion específico (ejemplos: potasio, sodio, calcio, cloruro). La técnica patch-clamp se utiliza para evaluar la corriente o el voltaje en la membrana asociado a la actividad de canales iónicos a través de la medición directa en tiempo real usando amplificadores ultrasensibles, sistemas de adquisición de datos de alta calidad y un software potente para evaluar los resultados.

    Patch-clamp

    Técnicas de electrofisiología patch-clamp

    En la técnica de fijación en parche de membrana (patch-clamp) se utiliza una micropipeta de vidrio que forma un sello de gigaohmio (GΩ) o gigasello hermético con la membrana celular. La micropipeta contiene un alambre bañado en una solución electrolítica que conduce los iones. La técnica de célula completa implica la rotura de un parche de membrana con una leve succión para proporcionar acceso eléctrico de baja resistencia, lo que permite el control del voltaje transmembrana. Alternativamente, los investigadores pueden desprender un parche de membrana de la célula y evaluar las corrientes a través de canales individuales mediante la técnica patch-clamp “inside-out” (interior hacia afuera) o “outside-out” (exterior hacia afuera).

  • Electrofisiología de fijación en parche de membrana (patch-clamp)

    Electrofisiología de fijación en parche de membrana (patch-clamp)

    La técnica de fijación en parche de membrana (patch-clamp) es una versátil herramienta electrofisiológica para entender el comportamiento de los canales iónicos. Todas las célula expresan canales iónicos, pero las células que con más frecuencia se estudian con técnicas de patch-clamp son las neuronas, fibras musculares, cardiomiocitos y ovocitos que sobreexpresan canales de iones individuales. Aquí puede encontrar más información sobre la electrofisiología de patch-clamp y los fundamentos de los canales iónicos.

    Más información  

    Compensación de resistencia en serie

    Compensación de la resistencia en serie usando el método de registro de célula completa

    La resistencia en serie es la suma de todas las resistencias entre el amplificador y el interior de la célula usando el método de registro de célula completa. Según la ley de Ohms, cuanto mayor es esta resistencia, mayor es la diferencia entre el nivel comando y los valores medidos. Esto genera un error en la medición del voltaje o corriente real, lo que causa potencialmente observaciones inexactas. Para solucionar esto, los amplificadores de Molecular Devices tienen circuitos integrados para mejorar el ancho de banda del registro compensando el error introducido por la caída de voltaje o corriente a través de la resistencia en serie.

  • Registro de canal único

    Técnica patch-clamp de registro de canal único

    En la técnica de fijación en parche de membrana (patch-clamp) se utiliza una micropipeta de vidrio que forma un gigasello hermético con la membrana celular. La micropipeta contiene un alambre bañado en una solución electrolítica que conduce los iones. Para medir canales iónicos individuales, se desprende un “parche” de membrana de la célula después de formar un gigasello. Si dentro del parche hay un canal iónico único, se pueden medir las corrientes. Axopatch 200B, con un perfil de ruido extremadamente bajo, es ideal para esta aplicación, maximizando la señal de los canales iónicos con la conductancia más baja.

    Amplificador de fijación de voltaje

    Amplificador de fijación de voltaje

    En un experimento con el método de fijación de voltaje, los investigadores pueden controlar el voltaje de la membrana en una célula y medir la corriente transmembrana necesaria para mantener ese voltaje. Este control del voltaje se denomina voltaje de comando. Para mantener este nivel de voltaje de comando, debe inyectarse corriente con un amplificador. La corriente inyectada será igual y opuesta a la corriente que escapa a través de los canales iónicos abiertos, lo que permite al amplificador medir la cantidad de corriente que pasa a través de los canales iónicos abiertos unidos a la membrana.

  • Registro de célula completa

    Técnica patch-clamp de registro de célula completa

    En la técnica patch-clamp de célula completa se utiliza una micropipeta de vidrio que forma un sello de gigaohmio (GΩ) o gigasello hermético con la membrana celular. Esta micropipeta contiene un alambre bañado en una solución electrolítica que conduce los iones. Posteriormente, se rompe un parche de membrana mediante una leve succión de modo que la micropipeta de vidrio proporciona un acceso de baja resistencia a la célula completa, permitiendo así al investigador controlar el voltaje transmembrana y evaluar la suma de todas las corrientes a través de los canales iónicos unidos a la membrana.

Especificaciones y opciones de los amplificadores de patch-clamp Axon Instruments

* Nivel de retención, paso de corriente, opción de filtro, múltiples salidas de señal, compensación de pipeta, compensación de capacitancia rápida y de célula completa, compensación de serie, neutralización de pipeta, balance de puente

Recursos de amplificadores de patch-clamp Axon Instruments

Presentaciones
Vídeos y seminarios web

Una solución de flujo de trabajo completa para electrofisiología patch-clamp

Para ver los videos, seminarios web y tutoriales destacados más recientes sobre nuestra solución de instrumentos Axon, incluidos los amplificadores de patch-clamp Axon, el digitalizador Digidata 1550B más HumSilencer y el paquete de software pCLAMP, visite nuestra galería de vídeos de Axon Patch-Clamp.

Tutorial de HumSilencer

Consejos técnicos con Jeffrey Tang: una introducción a HumSilencer

Calcular la constante de tiempo de caída y realizar ajustes de curva con el software Axon pCLAMP

Cómo combinar trazados, calcular la constante de tiempo de subida y caída y realizar ajustes de curva con el software Axon pCLAMP

Estudio mecanicista de recepción y transmisión

Uso de estudios de electrofisiología para agilizar el estudio mecanicista de recepción y transmisión

Actualización y opciones de hardware para consideraciones optogenéticas

Actualización y opciones de hardware para consideraciones optogenéticas para patrones de luz sincronizados

Efectos de la proteína beta amiloide sobre el canal BK hSlo1.1 en un modelo de ovocitos de Xenopus

Investigación de los efectos de la proteína beta amiloide sobre el canal BKhSlo1.1 en un modelo de ovocitos de Xenopus

Nanoporos, herramientas electrónicas para biofísica de molécula única

Nanoporos, herramientas electrónicas para biofísica de molécula única y bionanotecnologías

  • Citation
    Dated: Nov 30, 2020
    Publication Name: Biophysical Journal

    Microsecond Time-Scale Discrimination Among Polycytidylic and Polyuridylic Acid as Homopolymers Within Single RNA Molecules

    Single molecules of DNA or RNA can be detected as they are driven through an α-hemolysin channel by an applied electric field. During translocation, nucleotides within the polynucleotide must pass through the channel pore in sequential, single-file order because the limiting diameter of the pore can accommodate only one strand of DNA or RNA at a… View more

    Single molecules of DNA or RNA can be detected as they are driven through an α-hemolysin channel by an applied electric field. During translocation, nucleotides within the polynucleotide must pass through the channel pore in sequential, single-file order because the limiting diameter of the pore can accommodate only one strand of DNA or RNA at a time. Here we demonstrate that this nanopore behaves as a detector that can rapidly discriminate between pyrimidine and purine segments along an RNA molecule. Nanopore detection and characterization of single molecules represent a new method for directly reading information encoded in linear polymers, and are critical first steps toward direct sequencing of individual DNA and RNA molecules.

    Contributors: Mark Akeson, Daniel Branton, John J.Kasianowicz § EricBrandin, David W.Deamer  
    Go to article

  • Citation
    Dated: Mar 29, 2006
    Publication Name: Journal of Neuroscience

    Persistent Sodium Current in Layer 5 Neocortical Neurons Is Primarily Generated in the Proximal Axon

    In addition to the well described fast-inactivating component of the Na+ current [transient Na+ current (INaT)], neocortical neurons also exhibit a low-voltage-activated, slowly inactivating “persistent” Na+ current (INaP), which plays a role in determining neuronal excitability and synaptic integration. We investigated the Na+ channels… View more

    In addition to the well described fast-inactivating component of the Na+ current [transient Na+ current (INaT)], neocortical neurons also exhibit a low-voltage-activated, slowly inactivating “persistent” Na+ current (INaP), which plays a role in determining neuronal excitability and synaptic integration. We investigated the Na+ channels responsible for INaP in layer 5 pyramidal cells using cell-attached and whole-cell recordings in neocortical slices. In simultaneous cell-attached and whole-cell somatic recordings, no persistent Na+ channel activity was detected at potentials at which whole-cell INaP operates. Detailed kinetic analysis of late Na+ channel activity in cell-attached patches at 36°C revealed that somatic Na+ channels do not demonstrate “modal gating” behavior and that the probability of single late openings is extremely low (<1.4 × 10−4 or <0.02% of maximal open probability of INaT). Ensemble averages of these currents did not reveal a sustained component whose amplitude and voltage dependence could account for INaP as seen in whole-cell recordings.

    Contributors: Nadav Astman, Michael J. Gutnick and Ilya A. Fleidervish  
    Go to article

  • Citation
    Dated: Sep 15, 1996
    Publication Name: American Chemical Society

    Microelectrodes for the Measurement of Catecholamines in Biological Systems

    Many of the molecules involved in biological signaling processes are easily oxidized and have been monitored by electrochemical methods. Temporal response, spatial considerations, and sensitivity of the electrodes must be optimized for the specific biological application. To monitor exocytosis from single cells in culture, constant potential… View more

    Many of the molecules involved in biological signaling processes are easily oxidized and have been monitored by electrochemical methods. Temporal response, spatial considerations, and sensitivity of the electrodes must be optimized for the specific biological application. To monitor exocytosis from single cells in culture, constant potential amperometry offers the best temporal resolution, and a low-noise picoammeter improves the detection limits. Smaller electrodes, with 1-μm diameters, provided spatial resolution sufficient to identify the locations of release sites on the surface of single cells. For the study of neurotransmitter release in vivo, larger cylindrical microelectrodes are advantageous because the secreted molecules come from multiple terminals near the electrode, and the greater amounts lead to a larger signal that emerges from the Johnson noise of the current amplifier. With this approach, dopamine release elicited by two electrical stimulus pulses at 10 Hz was detected with fast-scan cyclic voltammetry in vivo. Nafion-coated elliptical electrodes have previously been shown to be incapable of detecting such concentration changes without extensive signal averaging. In addition, we demonstrate that high-pass filtering (200 Hz) of cyclic voltammograms recorded at 300 V/s decreases the background current and digitization noise at these microelectrodes, leading to an improved signal. Also, high-pass filtering discriminated against ascorbic acid, DOPAC, and acidic pH changes, three common interferences in vivo.

    Contributors: Paula S. Cahill, Q. David Walker, Jennifer M. Finnegan, George E. Mickelson, Eric R. Travis, and R. Mark Wightman  
    Go to article

Amplificadores de patch-clamp Axon Instruments

Cabezales (headstages)

Descripción Detalles Número de referencia
Axoclamp 900A Headstage HS-9A X0.1U Cabezal x0,1 1-2950-0359
Axoclamp 900A Headstage HS-9A X1U Cabezal x1 1-2950-0360
Axoclamp 900A Headstage HS-9A X10U Cabezal x10 1-2950-0361
Axoclamp 900A Headstage VG-9A X10U Cabezal a tierra virtual x10 1-2950-0362
Axoclamp 900A Headstage VG-9A X100U Cabezal a tierra virtual x100 1-2950-0363
MultiClamp 700B Headstage CV-7B Cabezal de patch-clamp 1-CV-7B
MultiClamp 700B Headstage CV-7B/BL Cabezal de bicapa 1-CV-7B/BL
MultiClamp 700B Headstage CV-7B/EC Cabezal de electroquímica 1-CV-7B/EC

Soportes de electrodo, adaptadores y componentes de soportes

Descripción Detalles Número de referencia
Soporte de electrodo para cabezales tipo U Admite pipetas de vidrio con un diámetro exterior de 1,0-1,7 mm 1-HL-U
Tapas de repuesto para soportes de electrodo Juego de 2 tapas de policarbonato para soportes HL-U 1-HL-CAP
Arandelas cónicas, diámetro interior 1,1 mm Juego de 10 arandelas cónicas naranjas para soportes HL-U, se ajustan a pipetas de vidrio de 1,0-1,1 mm de diámetro exterior 1-HLC-11
Arandelas cónicas, diámetro interior 1,3 mm Juego de 10 arandelas cónicas naranjas para soportes HL-U, se ajustan a pipetas de vidrio de 1,1-1,3 mm de diámetro exterior 1-HLC-13
Arandelas cónicas, diámetro interior 1,5 mm Juego de 10 arandelas cónicas naranjas para soportes HL-U, se ajustan a pipetas de vidrio de 1,3-1,5 mm de diámetro exterior 1-HLC-15
Arandelas cónicas, diámetro interior 1,7 mm Juego de 10 arandelas cónicas naranjas para soportes HL-U, se ajustan a pipetas de vidrio de 1,5-1,7 mm de diámetro exterior 1-HLC-17
Clavijas de 1 mm para soportes HL-U Juego de 3 clavijas de latón para soportes HL-U, 1 mm 1-HLP-U
Conectores de 2 mm con copas de soldadura Juego de 5 conectores de oro de uso general, 2 mm, con copas de soldadura 1-HLP-0
Alambre de plata Juego de 5 alambres de Ag, diámetro 0,25 mm, longitud 50 mm 1-HLA-005
Tubo de silicona para alambre de plata Tubo de silicona de 1 mm de diám. interior × 70 mm de longitud 1-HLT-70
Ensamblaje de pellet de plata/cloruro de plata Juego de 3 ensamblajes de pellet de plata/cloruro de plata 1-HLA-003
Adaptador para soportes BNC para cabezales tipo U Conecta soportes BNC a cabezales CV y HS con pinzas de sujeción roscadas (tipo U) 1-HLB-U
Adaptador de ángulo recto para soportes de electrodo HL-U Admite cabezales CV y HS con pinzas de sujeción roscadas (tipo U) 1-HLR-U

Células modelo

Descripción Detalles Número de referencia
Célula modelo para ovocitos Célula modelo Axoclamp/GeneClamp para ovocitos. Se conecta a cabezales de la serie HS tipo U 1-MCO-2U
Célula modelo para TEVC/DSEVC Célula modelo Axoclamp/GeneClamp para condiciones de fijación de voltaje de dos electrodos/fijación de voltaje de electrodo único discontinuo. Se conecta a cabezales de la serie HS tipo U 1-CLAMP-1U
Célula modelo para célula completa/canales únicos Célula modelo Axopatch/GeneClamp/MultiClamp para condiciones de patch-clamp de célula completa/canal único. Se conecta a cabezales de la serie CV tipo U 1-PATCH-1U
Célula modelo para bicapas Célula modelo Axopatch/GeneClamp/MultiClamp para condiciones de bicapa. Se conecta a cabezales de la serie CV tipo U 1-MCB-1U

Cables

Descripción Detalles Número de referencia
Cable para conectar 2 cabezales Axoclamp al amplificador Axoclamp 900A Permite utilizar 2 cabezales Axoclamp (HS-2, VG-2) en amplificadores Axoclamp 900A 1-2100-0934

Varios

Descripción Detalles Número de referencia
Unidad de control de amplificador SoftPanel Proporciona control con mandos y botones físicos para amplificadores Axoclamp serie 900 y MultiClamp serie 700 controlados por ordenador. Requiere una conexión USB. 1-SOFTPANEL (USB)
Zumbido remoto para Axoclamp 900A Control manual de la duración de zumbido para el amplificador Axoclamp 900A (1-50 ms) 1-2950-0366
Ensamblaje de pellet de plata/cloruro de plata Juego de 3 ensamblajes de pellet de Ag/AgCl y alambre de Ag 1-HLA-003