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Software de adquisición de imágenes de microscopio con software de análisis de microscopía opcional

 

El software de automatización de microscopía y análisis de imágenes MetaMorph® automatiza la adquisición, el control del dispositivo y el análisis de imágenes. Integra fácilmente hardware y periféricos de microscopios de fluorescencia diferentes en una única estación de trabajo personalizada. El software ofrece muchos módulos de aplicaciones fáciles de usar para análisis específicos de biología. En la gama se incluyen dos paquetes complementarios, el software MetaFluor® para la adquisición de imágenes ratiométricas de fluorescencia y el software MetaVue® para la adquisición y procesamiento de imágenes básicas.

  • Adaptable Icono

    Compatible con microscopios de otros fabricantes

    El software MetaMorph funciona con muchos microscopios, lanzamientos de láser y óptica TIRF disponibles en el mercado, y se puede habilitar en sistemas de adquisición de imágenes previamente instalados compatibles con el software MetaMorph.

  • Medir Icono

    Mida las imágenes ratiométricas de fluorescencia

    El software de adquisición de imágenes ratiométricas de fluorescencia MetaFluor® está diseñado para mediciones de iones intracelulares de longitud de onda única o múltiple para ofrecer más datos acerca del intercambio de iones y la función intracelular.

  • Análisis Icono

    Documente y analice las imágenes

    El sistema de adquisición de imágenes de investigación MetaVue™ es una aplicación de software sencilla y fácil de usar para adquirir y procesar imágenes, realizar funciones gráficas y archivar y recuperar imágenes.

Resolución de la organización y dinámica moleculares mediante microscopía de superresolución basada en la localización

Resolución de la organización y dinámica moleculares mediante microscopía de superresolución basada en la localización

Características

  • Imagen Icono

    Procesamiento de imágenes en tiempo real

    El procesamiento de imágenes es asistido por una aceleración por hardware de la unidad de procesamiento gráfico. Resuelve objetos subcelulares de tan solo 20 nm espacialmente y 40 nm axialmente.

  • Amplitud Icono

    Módulo de adquisición multidimensional

    Permite la captura de secuencias de adquisición complejas con una interfaz de usuario guiada flexible.

  • Análisis Icono

    Análisis morfométrico integrado

    Mide y clasifica objetos en clases discretas definibles por el usuario en función de cualquier combinación de parámetros morfométricos, como la forma, el tamaño o la densidad óptica.

  • Software Icono

    Módulo de barrido de cortes

    Automatiza la adquisición de múltiples imágenes y luego las une perfectamente. Ideal para muestras grandes de tejido, esto asegura la reproducibilidad al tiempo que elimina las suposiciones en los experimentos de mosaico.

  • Conectividad Icono

    Transmisión entre dispositivo y cámara

    Acelera la velocidad de captura de imágenes y transmite simultáneamente imágenes a la memoria durante la adquisición, capturando eventos celulares dinámicos para aplicaciones como la adquisición de imágenes cinéticas y en vivo.

  • Medir Icono

    Visor 4D con mediciones 3D

    Las herramientas para visualización multidimensional incluyen stacks de imágenes secuenciales, múltiples secciones Z, longitudes de onda, puntos temporales y posiciones. Los datos se pueden representar para la visualización y rotación de isosuperficies 3D.

Recursos más recientes

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Recursos del software de automatización de microscopía y análisis de imágenes MetaMorph

Presentaciones
Vídeos y seminarios web
Flujo de trabajo de inmunología y desarrollo de vacunas

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Flujo de trabajo de hibridomas

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Resolución de la organización y dinámica moleculares mediante microscopía de superresolución basada en la localización

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Reconstrucción con microscopía de superresolución en tiempo real basada en una única molécula: conceptos teóricos y prácticos

Reconstrucción con microscopía de superresolución en tiempo real basada en una única molécula: conceptos teóricos y prácticos

  • Citation
    Dated: Aug 20, 2011
    Publication Name: Journal of Nanoparticle Research

    Cerium oxide and platinum nanoparticles protect cells from oxidant-mediated apoptosis

    Catalytic nanoparticles represent a potential clinical approach to replace or correct aberrant enzymatic activities in patients. Several diseases, including many blinding eye diseases, are promoted by excessive oxidant stress due to reactive oxygen species (ROS). Cerium oxide and platinum nanoparticles represent two potentially therapeutic… View more

    Catalytic nanoparticles represent a potential clinical approach to replace or correct aberrant enzymatic activities in patients. Several diseases, including many blinding eye diseases, are promoted by excessive oxidant stress due to reactive oxygen species (ROS). Cerium oxide and platinum nanoparticles represent two potentially therapeutic nanoparticles that de-toxify ROS. In the present study, we directly compare these two classes of catalytic nanoparticles. Cerium oxide and platinum nanoparticles were found to be 16 ± 2.4 and 1.9 ± 0.2 nm in diameter, respectively. Using surface plasmon-enhanced microscopy, we find that these nanoparticles associate with cells. Furthermore, cerium oxide and platinum nanoparticles demonstrated superoxide dismutase catalytic activity, but did not promote hemolytic or cytolytic pathways in living cells. Importantly, both cerium oxide and platinum nanoparticles reduce oxidant-mediated apoptosis in target cells as judged by the activation of caspase 3. The ability to diminish apoptosis may contribute to maintaining healthy tissues.

    Contributors: Andrea Clark, Aiping Zhu, Kai Sun & Howard R. Petty  
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  • Citation
    Dated: Aug 30, 2007
    Publication Name: Journal of Neuroscience Methods

    High throughput quantification of cells with complex morphology in mixed cultures

    Automated image-based and biochemical assays have greatly increased throughput for quantifying cell numbers in in vitro studies. However, it has been more difficult to automate the counting of specific cell types with complex morphologies in mixed cell cultures. We have developed a fully automated, fast, accurate and objective method for the… View more

    Automated image-based and biochemical assays have greatly increased throughput for quantifying cell numbers in in vitro studies. However, it has been more difficult to automate the counting of specific cell types with complex morphologies in mixed cell cultures. We have developed a fully automated, fast, accurate and objective method for the quantification of primary human GFAP-positive astrocytes and CD45-positive microglia from images of mixed cell populations. This method, called the complex cell count (CCC) assay, utilizes a combination of image processing and analysis operations from MetaMorph™ (Version 6.2.6, Molecular Devices). The CCC assay consists of four main aspects: image processing with a unique combination of morphology filters; digital thresholding; integrated morphometry analysis; and a configuration of object standards. The time needed to analyze each image is 1.82 s. Significant correlations have been consistently achieved between the data obtained from CCC analysis and manual cell counts. This assay can quickly and accurately quantify the number of human astrocytes and microglia in mixed cell culture and can be applied to quantifying a range of other cells/objects with complex morphology in neuroscience research.

    Contributors: Pritika J.Narayan, Hannah M.Gibbons, Edward W.Mee, Richard L.Faull, Michae Dragunow  
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  • Citation
    Dated: Mar 21, 2007
    Publication Name: Journal of Neuroscience

    Functional Neural Development from Human Embryonic Stem Cells: Accelerated Synaptic Activity via Astrocyte Coculture

    How a naive human neuroepithelial cell becomes an electrophysiologically active neuron remains unknown. Here, we describe the early physiological development of neurons differentiating from naive human embryonic stem (hES) cells. We found that differentiating neuronal cells progressively decrease their resting membrane potential, gain… View more

    How a naive human neuroepithelial cell becomes an electrophysiologically active neuron remains unknown. Here, we describe the early physiological development of neurons differentiating from naive human embryonic stem (hES) cells. We found that differentiating neuronal cells progressively decrease their resting membrane potential, gain characteristic Na+ and K+ currents, and fire mature action potentials by 7 weeks of differentiation.

    Contributors: M. Austin Johnson, Jason P. Weick, Robert A. Pearce and Su-Chun Zhang  
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Productos y servicios relacionados del software de automatización de microscopía y análisis de imágenes MetaMorph